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胰酶分離提取
點(diǎn)擊次數(shù):671 發(fā)布時間:2010-5-24
一、原理與目的
提取制備酶的經(jīng)典方法,多采用硫酸銨分級沉淀,胰酶在75%飽和度硫酸銨中沉淀,其它雜蛋白一般在10%硫酸銨飽和度下被沉淀而除去。經(jīng)此多次提取,zui后在PH8.0硼酸緩沖液中得到結(jié)晶。
胰酶在PH3.0時zui穩(wěn)定,可在低溫下儲存較長的時間而不失活;低與此PH酶易變性;高于PH5時,酶易自溶而失活。因此提取制備胰酶的全部操作過程應(yīng)在低溫和低PH下進(jìn)行。胰酶以無活性的酶原形式存在于動物的胰臟中。胰蛋白酶原在正常生理?xiàng)l件下可被腸激酶和鈣離子所激活或自我環(huán)化成為有活性的酶。豬胰蛋白酶原分子量約24000-25000,而豬胰酶分子量為23400。在酶原活化的過程中,酶原N端Lys與Ile之間的 一個肽鏈被斷裂,丟失一個6肽,分子構(gòu)象發(fā)生改變,PI變成10.8。
本實(shí)驗(yàn)擬通過從豬胰臟中制備胰酶結(jié)晶實(shí)驗(yàn),掌握酶的制備、一般分離、提取、純化和結(jié)晶的操作技術(shù)。同時為親和層析、免疫學(xué)實(shí)驗(yàn)準(zhǔn)備實(shí)驗(yàn)樣品。
二、材料與試劑
1.儀器
紫外光分光光度計、恒溫水浴、離心機(jī)、組織搗碎機(jī)、PH計、顯微鏡、秒表、剪刀、鑷子、搪瓷盆、乳缽、大玻璃漏斗、抽濾瓶,塑料小桶、紗布、PH試紙,濾紙、玻璃器皿等。
2.材料:新鮮豬胰臟
3.試劑及溶液配制
pH2.5乙酸酸化水、2.5M H2SO4溶液、2M.NaOH溶液、5M NaOH溶液、01M HCL溶液、0.025M HCL溶液、0.01M HCL溶液、0.4M pH9.0硼酸緩沖液(母液為0.8M,用時稀釋一倍)、Tris、硫酸銨。
0.8M pH9.0硼酸緩沖液:取20ml0.8M四硼酸鈉溶液,混合后用PH計校正。
三、操作步驟
1.胰蛋白酶原的提取與分離:
(1)稱取1-1.5Kg新鮮豬胰臟,在冰浴下剝除脂肪和結(jié)締組織,在低溫下用絞肉機(jī)絞碎胰臟(或用高速組織勻漿機(jī)搗碎)加1-2倍體積以預(yù)冷卻的PH2.5-3.0乙酸酸化水溶液提?。ò?g組織相當(dāng)于1ml體積計算,以此類推)。檢查提取液中PH,若高于PH3.0時應(yīng)及時用10%乙酸調(diào)節(jié),使提取液維持PH2.5-3.0之間。在冷室5℃左右攪拌提取18-24h,而后用4層紗布過濾,盡量擰擠出濾液,濾液呈乳白色,用約300mlpH2.5乙酸酸化水再提取殘渣一次(時間約為1-2h),合并濾液,此時濾液PH值較高,可用5M H2PO4溶液調(diào)整PH至2.5-3.0,放置 3-5h后,渾濁濾液冷卻后,用玻璃漏斗進(jìn)行自然過濾,濾液呈黃色透明液體,收集濾液,量其總體積,棄去沉淀物。
(2)鹽析:濾液加固體粉狀硫酸銨進(jìn)行鹽析,使溶液至75%飽和度。鹽析溶液放冷室中過夜,次日用4000r/min離心機(jī)離心,或用布氏漏斗抽濾,濾餅經(jīng)壓干后稱重,可得約20g胰蛋白酶原粗制品。
(3)胰蛋白酶原得激活:將胰蛋白酶原粗制品用10倍體積得冷蒸餾水,分多次加入使濾餅溶解,溶液呈乳白色,量其體積,取出1ml溶液用于測定,溶液中硫酸銨得含量(約為濾餅重得1/4)。因?yàn)榱蛩徜@可以與活化劑鈣離子結(jié)合,生成硫酸鈣,如果鈣離子過少會直接影響胰酶原的激活過程,按濃度量計算,將已研細(xì)的固體CaCL2慢慢加入酶原溶液中,邊加邊攪拌均勻。用5MNaOH溶液調(diào)PH至8.0。在酶溶液加入約5mg結(jié)晶豬胰蛋白酶,輕輕攪拌均勻,置5℃冰箱中使酶原活化。
(4)純化:去除雜蛋白,量取胰蛋白酶溶液體積后,用5M硫酸溶液調(diào)節(jié)濾液PH至2.5-3.0,抽濾除去硫酸鈣沉淀,濾液體積約1000ml,加入已經(jīng)研細(xì)的硫酸銨粉末,使其溶液達(dá)40%飽和度(每升濾液加242g硫酸銨)。放置5℃冰箱中5-8h,抽濾除去沉淀。